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DNA提取方法的有效性和回收率比較:手動均質(zhì)化與Spex Genomax®

來源:培安有限公司   2024年01月22日 16:42  

有效地均質(zhì)化生物組織和破壞細(xì)胞的能力對于產(chǎn)生足夠質(zhì)量和數(shù)量的DNA和RNA研究所需的核酸至關(guān)重要。此外,由于其整體異質(zhì)性或?qū)嶒?yàn)室接收到的狀態(tài),許多樣品需要均質(zhì)化或減小顆粒大小以創(chuàng)建代表性樣品。均勻性是指在整個(gè)樣品中具有一致組成狀態(tài),而異質(zhì)性則在一個(gè)或多個(gè)特征上缺乏一致性。

實(shí)驗(yàn)室或分析樣品必須經(jīng)過處理,以便進(jìn)行提取、加工或消化以進(jìn)行進(jìn)一步測試。在生物樣品中,均質(zhì)化可以通過破壞生物組織和溶解細(xì)胞來加速處理速度,從而允許提取遺傳物質(zhì)。獲得均勻樣品的最常見方法是研磨或粉碎,這可以提高準(zhǔn)確性并減少不確定性。在實(shí)驗(yàn)室中,一些科學(xué)家使用手動或半自動的方法進(jìn)行組織處理,這可能會耗費(fèi)時(shí)間并且產(chǎn)生的樣品可能沒有完荃均質(zhì)化。實(shí)施自動化的均質(zhì)化和處理可以提高樣品的處理量,同時(shí)從生物材料中更快地恢復(fù)DNA/RNA。

這項(xiàng)研究將證明使用自動化均質(zhì)化方法在節(jié)省時(shí)間方面的效率,以及對遺傳物質(zhì)的回收和提取的改進(jìn)。在之前使用Spex Geno/Grinder®的研究中,發(fā)現(xiàn)農(nóng)業(yè)和環(huán)境產(chǎn)品的農(nóng)藥提取大大增強(qiáng)了回收率,同時(shí)顯著縮短了樣品制備的處理時(shí)間。

在這項(xiàng)新的研究中(由Spex和HoppeSyler共同進(jìn)行的聯(lián)合項(xiàng)目),使用手動小球攪拌器和自動化均質(zhì)器(Spex Genomax)來破壞各種生物組織,然后在進(jìn)行基因組DNA(gDNA)分離之前。分離的gDNA隨后用于下游敏感的應(yīng)用中,以確定手動與自動均質(zhì)器在分析學(xué)和分子生物學(xué)研究中的有效性。

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方法和材料

該工作流程主要涉及三個(gè)過程:1. 組織均質(zhì)化;2. DNA提取;3. DNA分離。

組織均質(zhì)化

將60毫克的新鮮組織加入500微升的DNA結(jié)合緩沖液和20微升的蛋白酶K(20 mg/mL),這些試劑來自Spex DNAmax動物基因組DNA分離試劑盒。根據(jù)制造商的協(xié)議進(jìn)行組織的均質(zhì)化和處理。然后將樣品在55oC下以700 rpm的速度輕輕搖動15分鐘進(jìn)行孵育。在蛋白酶K消化后,向裂解物中加入20微升的RNase A,并在室溫下孵育五分鐘,然后加入200微升的>95%乙醇。然后通過渦旋器將裂解物劇烈混合五秒鐘。

DNA提取和柱清洗

渦旋后,將700µL裂解物加載到DNAmax試劑盒提供的硅膠旋轉(zhuǎn)柱上,并在室溫下以13,000 xg離心一分鐘。丟棄流過液,并將500µL來自試劑盒的洗滌緩沖液A(添加了乙醇)添加到柱中,再次離心三分鐘。丟棄所得的流過液。

DNA分離和洗脫

將柱子離心額外一分鐘,并丟棄收集管。向柱子中加入100 µL的EB或TE緩沖液(pH 8.0),并在室溫下靜置三分鐘,然后再次離心一分鐘。收集含有純化的gDNA的流過液進(jìn)行分析和qPCR。

手動 VS Genomax:核酸分離和回收

在比較手動和自動研磨的第一次研究中,各種動物組織(牛里脊肉、雞胸肉和小鼠心臟)的樣品經(jīng)過均質(zhì)化、提取和分離gDNA的處理。使用手動均質(zhì)化的樣品平均處理時(shí)間超過200分鐘(接近2個(gè)半小時(shí)),而使用Spex Genomax的時(shí)間不到1/2小時(shí)(圖1)。使用自動化的Genomax方法,處理時(shí)間減少了超過86%。

DNA提取方法_1.png

圖1. 使用手動和Genomax處理gDNA均質(zhì)化、提取和分離的處理時(shí)間

比較了三種動物組織(牛里脊肉、雞胸肉和小鼠心臟)中提取的遺傳物質(zhì)的質(zhì)量和數(shù)量。牛里脊肉和雞胸肉代表了不同密度的動物肌肉組織。小鼠心臟代表了難以均質(zhì)化的纖維狀動物器官組織。傳統(tǒng)上,高密度和纖維狀組織最難均質(zhì)化,并且產(chǎn)生的可回收gDNA量最少。使用手動方法和Genomax處理后,分離gDNA并使用紫外/可見光譜法測試濃度(圖2)。

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圖2. 使用手動和Genomax方法在不同動物組織中回收DNA

手動方法通常會導(dǎo)致DNA提取和分離不完整,而使用Genomax進(jìn)行自動化均質(zhì)化手動方法通常會導(dǎo)致DNA提取和分離不完整,而使用Genomax進(jìn)行自動化均質(zhì)化可以實(shí)現(xiàn)完荃的均質(zhì)化和高效的提取,如圖3中的電泳凝膠所示。

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圖3. 使用手動和Genomax自動化均質(zhì)化處理的DNA的凝膠電泳

在這項(xiàng)首冫欠研究的一項(xiàng)后續(xù)研究中,使用商用手動小球混合器和Spex Genomax均質(zhì)器對30毫克的小鼠心臟進(jìn)行均質(zhì)化。根據(jù)制造商的建議,使用手動均質(zhì)器對小鼠心臟進(jìn)行均質(zhì)化,而Genomax中的組織則經(jīng)過三輪均質(zhì)化處理,每輪以1500 rpm的速度均質(zhì)化1分鐘,每輪之間有20秒的暫停。使用Spex DNAmax試劑盒分離DNA,并使用涵蓋小鼠Ostβ啟動子或Hic1基因體的引物制備用于qPCR分析的樣品。每個(gè)分析都進(jìn)行了雙重檢測。與手動均質(zhì)化相比,發(fā)現(xiàn)Genomax的產(chǎn)量增加了35倍。實(shí)際上,在使用0.25 µL至1 µL的分離gDNA時(shí),Genomax樣品產(chǎn)生了強(qiáng)烈的曲線,而使用手動均質(zhì)器分離的gDNA生成了1 µL的擴(kuò)增曲線(圖4)。

DNA提取方法_4.png

圖4. 小鼠有機(jī)溶質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)β啟動子的復(fù)制。9號染色體,65330248-65330323(75個(gè)堿基對) ,使用Genomax和手動處理

使用較小體積的gDNA(0.25 µL和0.5 µL)時(shí),目標(biāo)基因的擴(kuò)增在使用Genomax時(shí)被證明是成功的,而通過手動處理分離的gDNA未能產(chǎn)生任何信號(圖5)。

DNA提取方法_5.png

圖5. 低樣品體積下,使用手動方法和Genomax復(fù)制小鼠高甲基化癌癥1基因體的結(jié)果對比。染色體11,75058091-75058200(109個(gè)堿基對)

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結(jié)論

自動化的均質(zhì)化和細(xì)胞裂解過程提高了處理的效率,無論是在時(shí)間上還是在最終的gDNA提取上。使用Genomax等自動化過程,目標(biāo)gDNA的質(zhì)量和數(shù)量以及復(fù)制性都顯著提高,特別是與Spex DNAmax提取試劑盒結(jié)合使用時(shí)。總體而言,使用Genomax處理樣本的時(shí)間大大減少到不到半小時(shí),并且在較低的樣品體積下產(chǎn)生更多可復(fù)制的遺傳物質(zhì)副本。

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